Стадия развития трансплантированных нейрональных клеток-предшественников влияет на анатомические и функциональные результаты после травмы спинного мозга у мышей

Новости

ДомДом / Новости / Стадия развития трансплантированных нейрональных клеток-предшественников влияет на анатомические и функциональные результаты после травмы спинного мозга у мышей

Jun 10, 2024

Стадия развития трансплантированных нейрональных клеток-предшественников влияет на анатомические и функциональные результаты после травмы спинного мозга у мышей

Коммуникационная биология, том 6, номер статьи: 544 (2023) Цитировать эту статью 1333 Доступов 9 Подробности об альтметрических метриках Исправление издателя к этой статье было опубликовано 13 июня 2023 г.

Биология связи, том 6, Номер статьи: 544 (2023) Цитировать эту статью

1333 Доступа

9 Альтметрика

Подробности о метриках

Исправление издателя к этой статье было опубликовано 13 июня 2023 г.

Эта статья обновлена

Трансплантация нервных клеток-предшественников (NPC) является многообещающей терапевтической стратегией замены потерянных нейронов после травмы спинного мозга (ТСМ). Однако то, как клеточный состав трансплантата влияет на регенерацию и синаптогенез популяций аксонов хозяина или восстановление двигательных и сенсорных функций после травмы спинного мозга, еще плохо изучено. Мы трансплантировали NPC спинного мозга с ограниченным развитием, выделенные из эмбрионов мышей E11.5-E13.5, в участки SCI взрослой мыши и проанализировали рост аксонов трансплантата, клеточный состав, регенерацию аксонов хозяина и поведение. Трансплантаты на более ранней стадии демонстрировали больший рост аксонов, обогащение вентральных интернейронов спинного мозга и спинальных интернейронов группы Z, а также усиление регенерации аксонов хозяина 5-HT+. Трансплантаты на более поздних стадиях были обогащены подтипами межнейронов дорсального рога позднего рождения и спинальными интернейронами группы N, поддерживали более обширное врастание аксонов CGRP + хозяина и усугубляли тепловую гиперчувствительность. На двигательную функцию не повлиял ни один тип трансплантата NPC. Эти результаты демонстрируют роль клеточного состава трансплантата спинного мозга в определении анатомических и функциональных результатов после травмы спинного мозга.

Повреждение спинного мозга приводит к немедленной и постоянной потере нейронов спинного мозга, часто вызывая пожизненную неврологическую дисфункцию, включая, помимо прочего, паралич, потерю чувствительности, вегетативную дисфункцию и хроническую нейропатическую боль1,2,3. Трансплантация нервных клеток-предшественников рассматривается как многообещающая стратегия замены нейронов, способная регенерировать нервные цепи и улучшить функциональные результаты после ТСМ4,5. Действительно, за последние несколько десятилетий было проведено несколько клинических исследований по оценке терапевтического потенциала трансплантации нервных стволовых клеток и клеток-предшественников для лечения ТСМ у людей6,7,8,9,10,11. Несмотря на продвижение к клиническим испытаниям, крайне необходима дальнейшая характеристика биологии трансплантата и терапевтического механизма. Например, хотя было показано, что трансплантаты NPC спинного мозга населены различными подтипами нейронов12,13,14,15,16,17,18,19, до сих пор плохо понятно, как клеточный состав трансплантата влияет на регенерацию аксонов хозяина и функциональные результаты после ТСМ.

За последние четыре десятилетия большой объем знаний был получен в результате экспериментальных исследований на грызунах по трансплантации NPC спинного мозга эмбрионов грызунов19. Эти клетки подвергаются воздействию нормальных сигналов формирования паттернов развития и дифференцируются во множество эндогенных подтипов нейронов спинного мозга после трансплантации12,13,14,15,16,17,18,20,21,22,23, что делает их золотым стандартным источником клеток для характеристики биология трансплантат/хозяин в исследованиях клеточной трансплантации. Исследование, проведенное в 1983 году Рейером, Перлоу и Гутом, было первым, кто продемонстрировал выживаемость и нейрогенный потенциал трансплантатов твердых тканей спинного мозга плода крысы, полученных с 12 по 17 день эмбрионального развития (E12–E17), после трансплантации в поврежденную центральную нервную систему взрослого человека. система (ЦНС)24. Из-за их долговременной выживаемости и нейронной дифференцировки эмбрионы E14–E15 были признаны «наиболее оптимальным источником» для трансплантации спинного мозга по сравнению с трансплантатами на более поздних стадиях24. На основании обзора литературы, посвященного 70 исследованиям трансплантации NPC спинного мозга плода грызунов, спинной мозг крысы E14 (эквивалентный E12.5 у мышей25 в процессе развития) остается наиболее часто используемым источником донорской ткани NPC, при этом в 86,6% этих исследований использовались клетки, полученные из этой эмбриональной стадии (табл. 1). Несмотря на широкое использование донорской ткани одного возраста развития, нейрогенез спинного мозга у грызунов происходит в течение пяти дней26,27. Различные популяции нейронов спинного мозга рождаются в разные промежутки времени в период нейрогенеза, с различной численностью 11 популяций-предшественников с течением времени26. Это повышает вероятность того, что трансплантация NPC, полученных в разные дни нейрогенного периода, может давать трансплантаты с различным составом подтипов нейронов.

95% in all cases. Cells were stored on ice in NBM/B27 until use./p>95% in all cases. Cells were stored on ice in NBM/B27 until use. Rats received C5 dorsal column lesions using the same technique as above, except for the following changes: a tungsten wire knife with an extruded diameter of 1.5–2.0 mm (McHugh Milieux, Downers Grove, IL) was used, and the wire knife was inserted to a depth of 1.1 mm below the dorsal spinal cord surface prior to transection of the overlying axons. NPCs (total of 1.2 million cells in a volume of 3 μL were transplanted into sites of SCI immediately following the injury, and animals received the same post-operative care as above. Animals were sacrificed 4 weeks after NPC transplantation and transcardially perfused with saline followed by 4% paraformaldehyde, and tissue was collected for immunohistochemical analysis./p>

3.0.CO;2-Z" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F%28SICI%291096-9861%2819960122%29364%3A4%3C690%3A%3AAID-CNE7%3E3.0.CO%3B2-Z" aria-label="Article reference 130" data-doi="10.1002/(SICI)1096-9861(19960122)364:43.0.CO;2-Z"Article CAS PubMed Google Scholar /p>